在分子生物學研究中，雙熒光素酶報告基因檢測實驗因其高靈敏度、操作便捷和結果可靠，被廣泛應用于啟動子活性分析、miRNA靶基因驗證、轉錄因子功能研究等領域。然而，實驗過程中常常會遇到各種問題，例如熒光值異常、重復性差等，這些問題可能會影響實驗結果的準確性。為了幫助大家更好地掌握這一技術，我們整理了雙熒光素酶報告基因檢測實驗中的常見問題與解答，涵蓋了實驗設計、操作細節、數據分析等多個方面，希望這些內容助您輕松搞定實驗！

Q1:雙熒光素酶報告基因實驗可應用于哪些研究方向？

A1:①驗證microRNA同mRNA靶向互作；②驗證microRNA同lncRNA/circRNA靶向互作；③驗證轉錄因子與啟動子互作；④啟動子結構分析⑤啟動子SNP分析

Q2:如何選擇報告基因載體？

A2:螢火蟲熒光素酶基因和海腎基因（內參）在同一個載體上，選擇pmirGLO等載體；螢火蟲熒光素酶基因和海腎基因（內參）分別在一個載體上，可選擇pGL3/pRL系列載體；載體詳細信息可參考【干貨分享】手把手教你做雙熒光素酶實驗。

Q3:如何選擇主報告基因和內參基因的質粒比例？

A3:通常，主報告基因質粒與內參質粒的比例，建議作一個預實驗來調整（如螢火蟲載體與海腎載體比例分別用1：10、1：20、1：50、1：100），確保內參基因被準確檢測且不干擾主報告基因的表達。

Q4:如何保證檢測數據的有效性和真實性？

A4:①設立對照和重復：實驗中應設立陽性和陰性對照，以驗證實驗系統的有效性且需要做3個或3個以上復孔，并且引入另一個報告基因作為內參，主要是同批次樣品檢測值也可能出現浮動，排除多種干擾因素的影響（細胞狀態、轉染效率、載體質量、裂解速度、加樣精準度等）。②熒光值控制：熒光值過高可能會超出儀器的檢測范圍，導致無法檢測到值，一般建議將熒光值控制在5-6位之間。

Q5:熒光值過高或過低怎么辦？

A5:熒光值過高：可減少質粒轉染量，或對裂解產物進行稀釋后檢測;熒光值過低：可能是轉染效率低或裂解不充分，建議優化轉染條件、增加細胞量或延長裂解時間。

Q6:復孔間重復性差如何解決？

A6:確保樣本均一性，裂解后離心取上清檢測；定期校準移液器，保證加樣準確性；轉染時混合的力度/細胞量/時間等保持一致（同個數量級內的差異是可以接受的）。

Q7:雙熒光素酶檢測需要使用什么檢測板？

A7:建議使用全白板，優勢是靈敏度最高而且孔間相互干擾最小。

Q8:雙熒光素酶檢測需要使用什么儀器？

A8: 化學發光儀或帶化學發光檢測模塊的酶標儀。

Q9:海腎和螢火蟲是在同一個孔里面檢測嗎？能否分開檢測？

A9:同一個孔里檢測，不會相互影響，蘭博利德的海腎熒光素酶底物中有淬滅螢火蟲熒光值的物質。可以分開檢測，但是在一個孔里檢測會更加準確。

Q10:實驗過程有哪些注意事項？

A10:①樣品混勻：保證裂解產物與底物快速混合、混合時間一致，避免熒光素酶衰變的影響。②細胞裂解產物處理：細胞裂解產物常溫不超過6小時；-20℃一個月；-80℃半年。    ③反應體系：雙熒光素酶反應體系：20?μl（細胞裂解產物）、100?μl（螢火蟲熒光素酶底物）、100?μl（海腎熒光素酶底物），底物量可根據實際情況調整，但一定要保證底物過量，不然會造成檢測結果出現大的偏差。

相關產品信息：

更多疑問與咨詢，歡迎聯系Lablead…….

相關推薦：【干貨分享】手把手教你做雙熒光素酶實驗